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March 20, 2025
(H3)
Les tubes à vide reposent surLe principe de Bernoullietles gradients de pressionLe tube pré-évacué crée unpression négativeLe taux de débit sanguin est supérieur à la pression veineuse (généralement 20 à 30 kPa), ce qui dépasse la pression veineuse (5 à 15 mmHg).Q. Je vous en prie.suitéquation de Hagen-Poiseuille:
Q. Je vous en prie.=8LeLπΔPR4Je suis désolée.
Où?ΔP= gradient de pression,R= rayon de l'aiguille,Le= viscosité du sang (~3 ∼4 mPa·s), etL= longueur de l'aiguille.
Une idée de base: les écailles plus petites (par exemple, 21G contre 23G) réduisentR, réduisant les débits mais minimisant le risque d' hémolyse.
Verres: chimiquement inerte, idéale pour les essais d'oligo-éléments (pas de lessivage).
Plastique (PET): résistant aux bris, plus léger, mais peut nécessiter des revêtements en silicone pour réduire l'adhérence des cellules.
Les gels polymères (par exemple à base de polyester) ont unedensitéde 1,04 ‰ 1,08 g/cm3, intermédiaire entre le sérum (1,02 g/cm3) et les cellules (1,08 ‰ 1,10 g/cm3).empêchant le métabolisme cellulaire de modifier les analytes.
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Additif | Mécanisme | Utilisation par exemple |
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EDTA | Les chélates Ca2+ → inhibent la cascade de coagulation | CBC (préservation de la morphologie cellulaire) |
Citrate de sodium | Se lie au Ca2+ → empêche la conversion du fibrinogène → de la fibrine | Études de coagulation (PT/APTT) |
L'héparine | Activation de l' antithrombine III → inhibition de la thrombine | Électrolytes plasmatiques (K+, Na+) |
Note technique: le ratio stochiométrique de l'EDTA est de 1,5 à 2,2 mg/ml de sang.
Les particules de silice dans les tubes à toit rouge s'activentFacteur Hageman (FXII)L'optimisation de la surface (~ 300 m2/g) assure une formation rapide de caillots (20 à 30 min).
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Tubes: Tubes séparateurs sériques (SST) pour la détection des IgG/IgM.
Le défi: Interférence du gel dans l'ELISA → résolue par ultracentrifugation (10.000 RCF, 10 min).
Données: Sensibilité améliorée de 85% → 94% (J. Clin. Microbiologie., 2023).
Biopsies liquides:
Tubes: Tubes à ADN sans cellules (Streck) avec des fixants exclusifs.
La physique: Stabilise les nucléases viales chélateurs(EDTA) etrégulateurs osmotiquespour prévenir la fragmentation de l'ADN.
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Elle régit les dimensions des tubes, les additifs et l'étiquetage.
Tolérance au volume: ± 10% pour les tubes de moins de 10 ml.
seuil d' hémolyse: hémoglobine libre < 0,5 g/l (spectrophotométrie à 540 nm).
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Figure 1: Pression par rapport au volume de prélèvement sanguin dans les tubes sous vide
(Inclut ici un graphique interactif comparant les performances de l'aiguille 21G et 23G)
Figure 2: Efficacité du séparateur de gel par vitesse de centrifugation
(Graphique à barres montrant le rendement en plasma libre de cellules à 1 000 contre 2 000 RCF)
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A: Pour maintenirrésistance ioniquepour une mesure précise du facteur de coagulation.
R: Les plastifiants (p. ex. phtalates) dans les tubes en PET peuvent lixivier Zn2+ → utiliser des tubes certifiés exempts d'oligo-éléments.
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Hémolyse: rupture des globules rouges due à un stress de cisaillement ou à un déséquilibre osmotique.
L'ordre du tirage au sort: Séquence pour éviter la contamination croisée (par exemple, citrate avant EDTA).
SST: Tuyau séparateur sérique (barrière de gel).
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Problème: Perte de vide variable dans les régions à haute altitude (par exemple, les Andes).
Solution: Tubes avec bouchons renforcés (CLSI H21-A5).
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Le système de contrôle de l'équipement: Procédures de prélèvement de sang.
Chimique clinique(2023): Interférence additive dans la spectrométrie de masse.
Lignes directrices de l'OMS: Conservation dans des tubes à 4 ̊25°C, éviter le gel.
Suggestion d'éléments interactifs:
Glossaire des astuces: Passez le curseur sur des termes tels que RCF pour voir les définitions.
Le quiz: Testez vos connaissances sur les additifs pour tubes!
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